以下是詳細的操作方法、注意事項和故障排查指南。重要安全聲明：

操作前務必閱讀并理解伯樂提供的用戶手冊。

電轉儀工作時會產生高壓電，務必遵守安全規程，防止觸電。

操作時需佩戴個人防護裝備（PPE），如手套和護目鏡。

一、伯樂1652100電穿孔儀操作前準備

1、設備與耗材：

MicroPulser 電轉儀主機

電轉杯（Electroporation Cuvette），常用規格為 0.1 cm 或 0.2 cm 極間距。務必使用一次性電轉杯，且不能重復使用。

預冷的無菌離心管（如 1.5 mL）

預冷的復蘇培養基（如 SOC 或 LB 培養基）

預冷的無菌水或甘油水（用于洗滌細胞）

待轉化的 DNA（通常為質粒、連接產物等）。DNA 應溶于 低離子強度緩沖液（如 TE 或水） 中，高鹽分會導致電弧放電（打火），殺死細胞。

2、感受態細胞制備：

細胞需要被制備成電擊感受態細胞。這與化學感受態細胞的制備方法不同，通常需要多次洗滌以去除離子。

細胞應在冰上保持低溫，操作過程應迅速，以維持細胞的高效率。

二、伯樂1652100電轉儀標準操作步驟（以大腸桿菌為例）

1、開機預熱：

連接電源，打開儀器背面的開關。儀器會進行自檢，顯示屏亮起。

根據需要，通過面板上的按鈕選擇相應的程序。對于見的大腸桿菌，通常選擇模式 "Ec1" （E. coli 1）。其他模式（如 Ec2, Yeast, Bact）用于其他特定細胞類型。

2、準備細胞-DNA 混合液：

從 -80°C 冰箱中取出一管電擊感受態細胞，立即置于冰上讓其緩慢解凍（或用手心捂幾秒后立刻放回冰上）。

向預冷的無菌離心管中加入 1-100 ng 的 DNA（體積通常 < 5 µL）和 50-100 µL 的感受態細胞。

用移液器輕柔地混勻（避免產生氣泡），并立即放回冰上。整個過程要快。

3、加樣到電轉杯：

取一個 0.1 cm 或 0.2 cm 的潔凈電轉杯，放在冰上預冷。

將細胞-DNA 混合液全部（或大部分）轉移到電轉杯的底部，確保液體位于兩個電極之間，不要產生氣泡。

擦干電轉杯外壁的水分，防止電流短路。

4、電擊：

將電轉杯平穩地放入儀器樣品室的金屬槽中，確保與電極接觸良好。

快速用力地關上樣品室蓋子。蓋子會自動放電或需要手動按下按鈕。

按下脈沖觸發按鈕（Pulse）。你會聽到一聲蜂鳴音，屏幕上可能顯示實際的脈沖時間（約 4-5 ms）和電壓。

5、復蘇：

立即打開蓋子，取出電轉杯。

迅速向電轉杯中加入 0.5 - 1 mL 預溫（室溫或37°C）的復蘇培養基（如 SOC）。

用移液器輕輕吹吸數次，將細胞重懸并轉移到一個無菌的離心管中。

將離心管置于 37°C 搖床中，150-225 rpm 復蘇 45-90 分鐘，讓細胞恢復并表達抗生素抗性基因。

5、涂板篩選：

將復蘇后的菌液適當稀釋（或離心后重懸于少量培養基），涂布在含有相應抗生素的篩選平板上。

倒置平板，于 37°C 培養箱中培養 12-16 小時，觀察轉化子。

6、關機與清潔：

實驗結束后，關閉電源。

用 70% 乙醇擦拭樣品室，以防污染。

三、成功關鍵總結：

1、低離子強度：細胞和DNA必須無鹽。

2、低溫操作：細胞始終在冰上。

3、迅速復蘇：電擊后立即加入培養基拯救細胞。

4、杜絕電弧：使用新電轉杯、避免氣泡、保持干燥。

如果嚴格按照上述步驟操作仍遇到問題，建議系統性地排查每個環節，并從制備新鮮、洗滌電擊感受態細胞開始重試。